Under Microscope

  Geralmente, no terceiro dia do cultivo podemos encontrar embriões de 8-16 blastômeros, e este estágio é muito critério, visto que o embrião está passando por transição materno-embrionária, ou seja as células embrionária estão começando a produz as suas próprias proteínas e deixando a dependência das transcrição materna [1,2]. Neste estágio também ocorre alterações importantes nos níveis molecular e metabólico [3-8] que baseiam o desenvolvimento embrionário futuro. Muitas vezes, a parada de desenvolvimento ocorre neste estágio e chamada de “bloqueio de desenvolvimento” [1,2]. Os motivos reais sobre essa parada não são bem definitivos, mas baseando na experiência pessoal e abordagens na literatura o bloqueio de desenvolvimento pode ser relacionado com qualquer fator que reduz a competência oocitário e com os componentes dos meios da produção de embriões. Referência:   1. GRISART, B.; MASSIP, A.; DESSY, F. Cinematographic analysis of bovine embryo development in serum-free ...

  A previsão da produção de blastocistos via clivagem O zigoto (a primeira célula embrionária) forma-se em média de 24 horas após a fecundação [1], em 24 horas seguidas, podemos observar embriões de 2 ou 4 blastômeros sendo que na divisão normal esses blastômeros apresentam um tamanho igual [2]. Mas este pode indicar a produção futura dos blastocistos? Sim, visto que a clivagem normal 48 horas após a fecundação apresenta chance maior de desenvolvimento para blastocistos em comparação com os seus análogos atrasados [2,3]. A pergunta: como podemos verificar as anormalidades morfológicas da clivagem? Concordamos que as células devem ser uniformes (a, na figura), então um desvio deste padrão pode ser considerado anormalidade tendo como exemplos: a.        Embrião de duas células não uniformes [2,4] (b, na figura). b.  Embriões de duas células com fragmentos separados no espaço perivitelino [4] (c, setas amarelas na figura). b.   ...

  Assim, que você recebeu o tubo após ovum pick up (OPU), filtrou o conteúdo e lavou o filtro na placa marcada da seleção, várias estruturas podem ser visualizadas sob o estereomicroscópio, entre si folículos pré-antrais e antrias pequenos, aglomeração de células livres, oócitos cercados por camadas de células de cumulus (estruturas de objetivo) e oócitos desnudos. Destaca-se os gametas femininos que você vai colocar nos tubos da maturação, o que tem? Células de cumulus : o número ideal das camadas destas células somáticas é ≥3, essas células originadas de células cubicas formadas ao redor do gameta feminino que não forma a zona pelúcida ainda no folículo primário, e desenvolve as suas comunicações entre si e com o oolema (membrana do oócitos) a medida que os folículos desenvolvem em ondas foliculares atingindo o seu máximo no começo da formação do antro [1,2]. Essas células tendo missão nutritiva, além do seu papel na suspensão do núcleo oocitário até a ovulação e/ou a punção [...

  Mecanismos que regulam os neurônios de GnRH A Profa.Dra. Sue Moenter da Universidade de Michigan na sua palestra apresentou a regulação da liberação do hormônio liberador de gonadotrofina (GnRH) destacando o papel da kisspeptina e astrócitos no modo desta liberação. Um ponto muito importante que a GnRH excuta sua ações através de amplitude da sua produção (Secreção pulsátil). A palestra é uma da Série de webinars de "Insights in Neuroendocrinology of Reproduction"   de Society for the study of reproduction (SSR). Atenciosamente, REFERENCIA Monter, S. (2022, april 6–mei 4).  Mechanisms Regulating GnRH  [Poster]. SSR Insights in Neuroendocrinology and Reproduction, Michigan, USA. https://portal.ssr.org/iCore/Events/Event_Display.aspx?EventKey=NEURO22&s=03

  IN VITRO VS. IN VIVO MÓRULA      Neste documento, Barfield, (2015) discute a diferencia entre embriões bovinos produzidos in vitro e in vivo , destacando a importância da qualidade embrionária para processo da vitrificação e transferência de embriões e sugerindo a necessidade de um aplicativo para padronizar a classificação dos embriões produzidos in vitro .       Gostei de compartilhar algumas diferencias das murolas (Figura 1.)                          Figura 1. Desenho pessoal mostra as diferencia morfológicas entre                           a mórula in vitro (esquerdo) e a in vivo (direito),                           1; Compactação, 2; Vacúolos, 3; Detritos e células extrudadas,       ...

  FACILITE E5- MEDIDA E CONTAGEM DOS FOLÍCULOS E CORPOS LÚTEOS Na postagem E4 AS FOTOS DA ULTRASSONOGRAFIA E AS MEDIDAS vimos como salvar as fotos e tirar a medida. Para medir e contar os folículos segue os passos seguintes de acordo com o trabalho de Komatsu e Masubuchi., (2016): 1. Abra a foto que tem a medida tirada anteriormente e faça " Set Sacale" do mesmo jeito na E2 (Figrua 1.); Figura 1.      2. Abra as fotos salvadas para começar a medir os folículos e corpos lúteos (Figura 2., Figura 3. e Figura 4); Figura 2. Figura 3. Figura 4. Nas figuras, as cores cinza clara e preta indicam tecido luético e folículo antral, respectivamente.     3. Abra o file de "Results" para contar o numero das estruturas medidas (Figura 5.).  Figura 5. Agora pode contar as estruturas e calcular seus diâmetros.  Geralmente, para medir o diâmetro de uma estrutura, tem que calcular a media de dois diâmetros da mesma. As fotos são baseadas em DesCôteaux ...

FACILITE E4- AS FOTOS DA ULTRASSONOGRAFIA E AS MEDIDAS      Quando tem um trabalho que precisa de medida e contagem dos folículos antrais e corpos lúteos, esteja difícil a realizar no campo devido o tempo, então para acelerar este processo será ideal a salvar as fotos e tirar as medidas pelo imageJ (Autor).      Para salvar as fotos e preparar as mesas para fazer as medidas que precisa, segue os passos seguintes baseia-se no trabalho de Komatsu e Masubuchi., (2016): 1. Prepare um pendrive para ligar no USB do aparelho de ultrassonografia; 2. Após a ter a ultrassonografia ligada, tire um medida (Por exemplo 5cm) e salve no pendrive (Figura 1.); Figura 1. 3. Salve as fotos dos ovários no pendrive; 4. Baixe as fotos nos seu computador para começar a medir pelo imageJ (Figura 2. e .3). Figura 2. Figura 3.  As fotos são baseadas em DesCôteaux et al., (2009).   REFERENCIA DesCôteaux, L., Colloton, J., & Gnemmi, G. (2009). Practical Atlas ...