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Under Microscope

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 Under Microscope This blog represents views about scientific works especially the ones that focus on animal gametes and reproduction, the main objective is to discuss the views and thoughts with other scientists and specialists in the scientific areas, this blog can only progress with your collaboration. Best Regards, Wasim

GnRH, Kisspeptina, Secreção pulsátil

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  Mecanismos que regulam os neurônios de GnRH A Profa.Dra. Sue Moenter da Universidade de Michigan na sua palestra apresentou a regulação da liberação do hormônio liberador de gonadotrofina (GnRH) destacando o papel da kisspeptina e astrócitos no modo desta liberação. Um ponto muito importante que a GnRH excuta sua ações através de amplitude da sua produção (Secreção pulsátil). A palestra é uma da Série de webinars de "Insights in Neuroendocrinology of Reproduction"   de Society for the study of reproduction (SSR). Atenciosamente, REFERENCIA Monter, S. (2022, april 6–mei 4).  Mechanisms Regulating GnRH  [Poster]. SSR Insights in Neuroendocrinology and Reproduction, Michigan, USA. https://portal.ssr.org/iCore/Events/Event_Display.aspx?EventKey=NEURO22&s=03

Qualidade de embriões, Embriões bovinos, Transferência de embriões

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  IN VITRO VS. IN VIVO MÓRULA      Neste documento, Barfield, (2015) discute a diferencia entre embriões bovinos produzidos in vitro e in vivo , destacando a importância da qualidade embrionária para processo da vitrificação e transferência de embriões e sugerindo a necessidade de um aplicativo para padronizar a classificação dos embriões produzidos in vitro .       Gostei de compartilhar algumas diferencias das murolas (Figura 1.)                          Figura 1. Desenho pessoal mostra as diferencia morfológicas entre                           a mórula in vitro (esquerdo) e a in vivo (direito),                           1; Compactação, 2; Vacúolos, 3; Detritos e células extrudadas,                          4; Espaço perivitelino. REFERENCIA CETA/ACTE & AETA, & Barfield, J. [Document], www.aeta.org (2015). Retrieved 2022, from https://www.aeta.org/docs/Evaluation_of_in_vitro_produced_bovine_embryos.pdf .     Atenciosamente,

E5- MEDIDA E CONTAGEM DOS FOLÍCULOS E CORPOS LÚTEOS

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  FACILITE E5- MEDIDA E CONTAGEM DOS FOLÍCULOS E CORPOS LÚTEOS Na postagem E4 AS FOTOS DA ULTRASSONOGRAFIA E AS MEDIDAS vimos como salvar as fotos e tirar a medida. Para medir e contar os folículos segue os passos seguintes de acordo com o trabalho de Komatsu e Masubuchi., (2016): 1. Abra a foto que tem a medida tirada anteriormente e faça " Set Sacale" do mesmo jeito na E2 (Figrua 1.); Figura 1.      2. Abra as fotos salvadas para começar a medir os folículos e corpos lúteos (Figura 2., Figura 3. e Figura 4); Figura 2. Figura 3. Figura 4. Nas figuras, as cores cinza clara e preta indicam tecido luético e folículo antral, respectivamente.     3. Abra o file de "Results" para contar o numero das estruturas medidas (Figura 5.).  Figura 5. Agora pode contar as estruturas e calcular seus diâmetros.  Geralmente, para medir o diâmetro de uma estrutura, tem que calcular a media de dois diâmetros da mesma. As fotos são baseadas em DesCôteaux et al., (2009).   Atenci

E4- AS FOTOS DA ULTRASSONOGRAFIA E AS MEDIDAS

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FACILITE E4- AS FOTOS DA ULTRASSONOGRAFIA E AS MEDIDAS      Quando tem um trabalho que precisa de medida e contagem dos folículos antrais e corpos lúteos, esteja difícil a realizar no campo devido o tempo, então para acelerar este processo será ideal a salvar as fotos e tirar as medidas pelo imageJ (Autor).      Para salvar as fotos e preparar as mesas para fazer as medidas que precisa, segue os passos seguintes baseia-se no trabalho de Komatsu e Masubuchi., (2016): 1. Prepare um pendrive para ligar no USB do aparelho de ultrassonografia; 2. Após a ter a ultrassonografia ligada, tire um medida (Por exemplo 5cm) e salve no pendrive (Figura 1.); Figura 1. 3. Salve as fotos dos ovários no pendrive; 4. Baixe as fotos nos seu computador para começar a medir pelo imageJ (Figura 2. e .3). Figura 2. Figura 3.  As fotos são baseadas em DesCôteaux et al., (2009).   REFERENCIA DesCôteaux, L., Colloton, J., & Gnemmi, G. (2009). Practical Atlas of Ruminant and Camelid Reproductive Ultraso

E3- MEDIDAS DOS OÓCITOS E EMBRIÕES

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FACILITE E3- MEDIDAS DOS OÓCITOS E EMBRIÕES Na postagem E2- AS FOTOS DO MICROSCÓPIO PELO SEU CELULAR, vimos como tirar as fotos e medir as estruturas na E3, vamos ver como calcular as medidas e preparar a foto para a publicação. Estes passos com um exemplo de Oócitos bovinos maturados por , baseia-se nos trabalhos de Báez et al. (2019), Pioltine et al. (2021) e Paschoal et al. (2016). 1. Após a medir os diâmetros e salvar no Excel, substitua (.) por (,), em seguida faça um campo para transferir mm para µm (X1000) (Figura 1.); Figure 1. 2. Reabra a foto e faça uma linha na área vazia (Seta vermelha) seguindo o "Lenght" na tela do programa (Seta verde) ate medir 0.05mm e salve a foto (Figura 2.); Figura 2. 3. Agora pode colocar uma linha preta da mesma medida da linha e escrever 50µm (Figura 3.); Figura 3. O diâmetro dos oócitos é de acordo com Lechniak et al. (2002) e o mesmo jeito pode ser utilizado com os embriões. Agora a foto esta pronta para a publicação. REFERE

E2- AS FOTOS DO MICROSCÓPIO PELO SEU CELULAR

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  FACILITE E2- AS FOTOS DO MICROSCÓPIO PELO SEU CELULAR Atualmente, o celular com câmara é um aparelho disponível e accessível, além disso, nem tudo mundo pode ter uma câmera especifica para o microscópio, então para tirar as foto das estruturas do seu trabalho e fazer as medidas pode usar o seu celular, mas fique atento da distancia e zoom fixos (Autor). Os passos para medir as estruturas (O exemplo: Oócitos bovinos na segunda fase da maturação nuclear MII) por imageJ, baseia-se nos trabalhos de Báez et al. (2019), Pioltine et al. (2021) e Paschoal et al. (2016). 1. Fixe seu celular na lenta do microscópio com um assessório; 2. Mantenha o magnificação do microscópio; 3. Mantenha o mesmo zoom para todas as fotos (Figura 1.); Figura 1. Ilustração de uma foto   tirada pelo celular fixado pelo ada ptador na lenta. 4. Depois de tirar a foto coloque de baixo do microscópio uma régua e medir um mm (Figura 2.); Figura 2. Ilustracao de uma foto de 1mm da régua no mesmo magnificação e a

E1-E5 AS MEDIDAS

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FACILITE E1-E5 AS MEDIDAS E1- SOFTWARE IMAGEJ ImageJ é um software documentado, gratuito e desenvolvido no National Institutes of Health (NIH) (Collins., 2007; Schneider et al., 2012) sendo utilizado por muitos pesquisadores para analisar as fotos dos oócitos (Báez et al., 2019; Pioltine et al., 2021), embriões (Paschoal et al., 2016), folículos, e corpos lúteos (Brito et al., 2022). O uso de imageJ para medir as estruturas no campo da reprodução animal é explicado em cinco episodies (E) E1- Software imagej; E2- As fotos do microscópio pelo seu celular; E3- Medidas dos oócitos e embriões; E4- As fotos da ultrassonografia e as medidas; E5- Medida e contagem dos folículos e corpos lúteos. Para o download segue o link: https://imagej.nih.gov/ij/download.html SUA COLABORAÇÃO E DISCUSSÃO É O SUCESSO DA FACILITE. REFERENCIA Collins T. J. (2007). ImageJ for microscopy.  BioTechniques ,  43 (1 Suppl), 25–30. Báez, F., Camargo, Á. A., & Gastal, G. (2019). Ultrast